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科研 | 病原體和耐藥突變的快速篩查——抗生素精準使用的前提(Nature子刊)

本文由面癱的貓編譯,董小橙、江舜堯編輯。

原創(chuàng)微文,歡迎轉(zhuǎn)發(fā)轉(zhuǎn)載。

導讀

抗生素濫用導致耐藥菌大量出現(xiàn),使可用的抗生素越來越少。避免抗生素的濫用,需要在快速確定病原體的同時,快速確定它攜帶的耐藥突變,以指導抗生素的精準使用。

作者開發(fā)出一種高度集成的微型生物芯片。該芯片具有1024個像素單元,每個像素單元能夠獨立地進行實時熒光PCR檢測或者突變分析。一張芯片即可在2小時以內(nèi),完成多種病原的篩查和耐藥位點分析。作者用呼吸道病毒和結(jié)核桿菌分別證明了該芯片對病原多重檢測和位點突變多重分析具有較好的適用性。

論文ID

原名Multiplexed identification, quantification and genotyping of infectious agents using a semiconductor biochip

譯名一種可用于病原體多重檢測、定量和基因分型的半導體生物芯片

期刊Nature biotechnology

IF35.724

發(fā)表時間2018年

通信作者Arjang Hassibi 

通信作者單位InSilixa, Inc., Sunnyvale, California, USA

實驗設(shè)計

作者使用亞微米級的互補金氧半導體(CMOS)工藝,將1024DNA生物檢測器集成到一塊微型芯片中。借助反向熒光技術(shù),每個DNA生物檢測器都能對反應(yīng)液中的核酸進行特異且獨立的實時檢測。另外,芯片中集成了熱循環(huán)系統(tǒng)和光學檢測系統(tǒng),在實現(xiàn)多重檢測的同時,也實現(xiàn)了同源(閉管)檢測。在驗證實驗中,作者證明該芯片既能夠一次性準確檢出多種呼吸道病毒(RNADNA),也能夠一次性檢出結(jié)核桿菌多個基因上的50多個耐藥突變。

實驗內(nèi)容

核酸檢測分析流程

芯片主要由兩部分組成:DNA生物檢測器陣列(DNA biosensor array)及其上的液體反應(yīng)室(Fluidic chamber)。核酸和多重反應(yīng)試劑進入反應(yīng)室后,在熱循環(huán)模塊的控制下,對感興趣片段(Regions of interest, ROI)進行PCR擴增。因正向引物(pf)過量、反向引物(pr)不足,PCR擴增以非對稱方式進行,產(chǎn)生大量正向單鏈DNAssDNA)復(fù)制子(af)。DNA生物檢測器上包被有反向熒光捕獲探針(Capture probes),可捕獲正向ssDNA復(fù)制子并釋放信號,從而實現(xiàn)對PCR過程的實時監(jiān)測。在實時雜交階段,ssDNA復(fù)制子與特異捕獲探針結(jié)合。在熔解曲線階段,隨溫度升高,復(fù)制子和探針發(fā)生解離并釋放信號。因同一復(fù)制子與野生型(WT probe)和突變型探針(MT probe)的結(jié)合具有熱力學差異,通過對兩者熔解曲線進行分析,能夠?qū)蛭稽c進行突變檢測。

核酸檢測分析流程

反向熒光技術(shù)實現(xiàn)實時能量轉(zhuǎn)換

基于微型芯片實現(xiàn)閉管多重核酸檢測,需要一種基于固相雜交的實時能量轉(zhuǎn)換方法。傳統(tǒng)能量轉(zhuǎn)換方式(光學、電化學或者機電轉(zhuǎn)換)受到諸多限制,譬如,靈敏性不夠高、不適用于高密度陣列或者使用溫度范圍有限。作者采用反向熒光轉(zhuǎn)換技術(shù)(inverse fluorescence transductionIFT)以克服這些限制。傳統(tǒng)熒光檢測用非熒光探針捕獲熒光標記靶標ssDNA,靶標增加則檢測到的信號升高(圖2a)。在反向熒光技術(shù)中,捕獲探針為熒光集團標記,靶標ssDNA為淬滅集團標記。探針因捕獲到靶標ssDNA而導致熒光集團淬滅,熒光信號減弱(反向)。因反應(yīng)液中包含的是淬滅集團而不是熒光集團,在應(yīng)用反向熒光技術(shù)時,反應(yīng)液對熒光信號檢測的干擾被極大地降低,從而可用于實現(xiàn)對固相雜交陣列的實時光學測量(圖2b2c)。

作者提出兩種反向熒光策略:(1)在正向引物的5’端標記淬滅集團,通過序列互補使熒光集團和淬滅集團近距離接觸以實現(xiàn)熒光淬滅(圖2b)。(2)用淬滅集團標記dNTP,結(jié)合定制的Taq聚合酶(兼容淬滅集團標記的dNTP)實現(xiàn)復(fù)制子的合成。復(fù)制子的每一個核苷酸上都攜帶一個淬滅集團,從而實現(xiàn)更高效的淬滅反應(yīng)(圖2c)。盡管兩種策略都可實現(xiàn),但也各有缺點:(1)探針需要特殊設(shè)計以保證熒光集團和淬滅集團能夠近距離作用;(2dNTP的淬滅集團標記導致合成酶工作效率下降、PCR效率下降。

2  DNA探針結(jié)構(gòu)示例,以及反向熒光技術(shù)和傳統(tǒng)熒光技術(shù)檢測點突變時的熔解曲線

實時DNA探針設(shè)計

反向熒光探針包括三個部分:(1)錨定接頭(Linker),將探針固定到CMOS芯片上;(2)捕獲探針序列(Capture sequence),由15-35 個核苷酸構(gòu)成,與靶標序列互補配對,以捕獲靶標ssDNA;(3)雙熒光標記(Label),在胸腺嘧啶六聚體兩端分別標記FAMTAM熒光集團。(圖3a

相較于傳統(tǒng)單熒光集團標記,雙熒光標記有兩個優(yōu)點:(1)激發(fā)波長和發(fā)射波長相差達到88nm,即由FAM吸收激發(fā)光,由TAM發(fā)出熒光;(2FAMTAM都可與淬滅集團相互作用,使淬滅距離更大,淬滅光譜更廣。(圖3a

3  CMOS生物芯片的結(jié)構(gòu)和各組件的微結(jié)構(gòu)

4 CMOS芯片結(jié)構(gòu)

CMOS生物芯片能夠在實時監(jiān)測IFT信號的同時控制液體反應(yīng)室的溫度。外源激發(fā)光透過液體反應(yīng)室的透明塑料蓋,激發(fā)DNA生物探測器上IFT探針發(fā)出熒光。激發(fā)光和熒光透過CMOS層后,激發(fā)光被阻擋,熒光被底層的光電二極管接收并轉(zhuǎn)化為電信號。電信號經(jīng)光電流檢測器(ΣΔ detector3g)放大和數(shù)字化后輸出。熒光檢測系統(tǒng)每秒鐘可檢測1-50次,檢測信號范圍至少為5個數(shù)量級。32×32陣列共有1024DNA生物檢測器(圖3e)。每個檢測器獨立工作,包被特定的捕獲探針并獨立進行信號檢測。

實現(xiàn)PCR熱循環(huán)和固相熔解曲線分析的溫控系統(tǒng)主要由三部分組成:電阻加熱器件(在PCB層,圖3b)、溫度感應(yīng)器件(CMOS層,圖3c)和散熱器件(基底層,圖3d)。程序化的溫度控制系統(tǒng),能夠?qū)囟冗M準確測定(±0.3°C)。升降溫速率可達到±4°C/s

多重呼吸道病原檢測和定量

實驗所用呼吸道病原為四種RNA病毒(甲型流感病毒,乙型流感病毒,呼吸道合胞病毒,副流感病毒2型)和兩種DNA病毒(腺病毒C亞屬和E亞屬)。反應(yīng)液為一步法RT-PCR混合液,并加入一份臨床樣本核酸、陽性質(zhì)控核酸和八對淬滅集團標記的引物對。實驗所用芯片的249個像素單元包被有IFT探針。其中一組探針是用于捕獲反向引物,以檢測反向引物的消耗進行擴增曲線測定;另一組探針用于捕獲PCR產(chǎn)物正向復(fù)制子,驗證多重PCR成功進行。每一個探針包被5個像素單元,用作重復(fù)測定。

在病原定量檢測實驗中,作者用5個濃度的甲型流感病毒RNA100100000 copies/μl)作為檢測底物,進行3次重復(fù)實驗。通過檢測溶液中流感反向引物的消耗(圖4a)繪制擴增曲線(圖4b),進而估算起始模板濃度。與傳統(tǒng)實時熒光PCR類似,Ct值與濃度的log值呈負相關(guān)(R2= 0.97Ct= -3.46log10[C] + 40.63)(圖4b)。PCR結(jié)束后,包被復(fù)制子捕獲探針的像素單元可對反應(yīng)液中的復(fù)制子進行特異性熔解曲線分析(圖4c)。

在病原多重檢測實驗中,作者對11份匿名病人樣本進行檢測,每個樣本使用一塊CMOS芯片。只有當擴增曲線(C< 40)和熔解曲線(melt area > 0.1)都達到限值時才判斷樣本為陽性。并同時用商業(yè)化試劑盒和儀器對11份樣本進行檢測。CMOS芯片檢測結(jié)果與商業(yè)化檢測方法一直(圖4d, 4e, 4f)。證明該芯片在病原多重檢測結(jié)果具有較高的準確性。

采用芯片的呼吸道病毒檢測和定量實驗

結(jié)核桿菌耐藥位點多重檢測

為了證明CMOS生物芯片的基因分型準確性和其多重檢測能力,作者同時對結(jié)核桿菌(M. tuberculosis,MTB)基因組上16個片段內(nèi)的54個耐藥位點進行檢測。這16個感興趣片段(TB1-TB16)分布在6個不同的基因上,而54個耐藥位點分別與三種抗生素有關(guān)。實驗對14MTB進行檢測,其中一株為藥敏型WT,另外13株為耐藥型MT。所有MTB序列都經(jīng)二代測序驗證,與表型一致。實驗檢測底物的核酸濃度為大約5000 genomic copies/ 25μl。

本實驗中IFT采用淬滅集團標記dCTP的策略,所以PCR產(chǎn)生的復(fù)制子攜帶大量淬滅集團。實驗所用芯片在678個像素單元上包被了104IFT探針,用于固相熔解曲線分析以區(qū)分WTMT。每種探針包被5個像素單元,用作重復(fù)。WTMT熔解曲線差值的總和用以判斷基因型。正值為野生型,負值為突變型。

實驗結(jié)果顯示,一方面,對WT上所有未突變位點CMOS生物芯片都正確分型;另一方面,對13MT攜帶的突變位點,CMOS芯片也都成功檢出。值得注意的是,有些突變位點處在二級結(jié)構(gòu)高度復(fù)雜的高GC區(qū)。(圖5

為了更好地展示該芯片對SNP檢測的適用范圍,作者介紹了其中兩個SNP的檢測引物的設(shè)計策略。I572F SNP位于TB16復(fù)制子的無規(guī)卷曲段。一個中間帶有SNP的簡短捕獲序列即可成功檢測該SNP(圖6a)。而D94G SNP位于TB1的穩(wěn)定發(fā)卡結(jié)構(gòu)內(nèi)(Tm> 80°C),探針難以到達。作者根據(jù)局部結(jié)構(gòu)設(shè)計了更為復(fù)雜的捕獲序列,以使探針和復(fù)制子更易結(jié)合(圖6b)。兩個SNP都被成功檢出。

5  MTB耐藥突變檢測實驗

6  依據(jù)DNA二級結(jié)構(gòu)設(shè)計熔解曲線分析探針示例

實驗結(jié)論

作者首先設(shè)計了一種新的實時能量轉(zhuǎn)換技術(shù)(IFT)。采用這一技術(shù),作者開發(fā)了一塊高度集成的CMOS生物芯片用于核酸檢測和位點分析。該核酸檢測平臺具有快速(小于2h)、精確(擴增曲線定量分析)、多重(受陣列大小和冗余度限制)且同源(閉管)的特點。通過檢測不同濃度的核酸和6種呼吸道病毒(包括DNARNA)的核酸,作者證明該芯片具有良好的核酸定量和多重檢測能力。通過對54個耐藥位點的準確檢測,作者證實該芯片不僅能夠檢測病原,還能夠分析病原攜帶的耐藥突變。

作者認為該核酸檢測平臺存在4點不足:(1)因為捕獲探針是基于已知序列,所以此方法只能檢測已知耐藥突變。(2)因為PCR反應(yīng)體系自身的限制,難以分析超過100個感興趣片段。(3)當位點的WTMT混合出現(xiàn)時,MT比例小于20%時難以準確檢出。(4)此芯片的現(xiàn)場使用需要再進一步集成核酸提取系統(tǒng)。

點  評

小編以為,一塊小芯片在2小時內(nèi),不僅對病原進行多重檢測、定量檢測,還可檢出病原攜帶的耐藥突變,簡直是精準醫(yī)療時代的必備佳品。與多重檢測和定量檢測相比,耐藥突變檢測才是本芯片的最大亮點。2小時以內(nèi)出結(jié)果,比傳統(tǒng)培養(yǎng)法相比(大約24h)提高了一個數(shù)量級,即使與二代測序相比(不少于12h)也加快了很多。但一個芯片只能檢測一個樣本,顯然與它應(yīng)有的逼格不符。期待作者團隊未來新作!

評價部分僅屬小編的個人觀點,歡迎大家點贊評論。小編愿與大家一起進步!




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